COSMOSIL Cholester色譜柱

產(chǎn)品簡介：COSMOSIL Cholester色譜柱是反相體系的HPLC柱，膽甾醇鍵合硅膠填料，具有和傳統(tǒng)的烷基鍵合C18、C30硅膠填料一樣的疏水性，但是在相同的分析條件下，Cholester對疏水化合物的立體選擇性好。

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更新時間：2023-11-08

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液相色譜柱

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產(chǎn)品介紹

產(chǎn)品描述

COSMOSIL Cholester色譜柱是反相體系的HPLC柱，膽甾醇鍵合硅膠填料，具有和傳統(tǒng)的烷基鍵合C18、C30硅膠填料一樣的疏水性，但是在相同的分析條件下，Cholester對疏水化合物的立體選擇性好。

Cholester與C18柱具有相同的疏水性。因此使用Cholester代替C18柱或C30柱時，不需要改變分析條件。與傳統(tǒng)的C18柱相比，Cholester具有更強的選擇性和分離同分異構(gòu)體或結(jié)構(gòu)類似物的能力，它可以很好的代替?zhèn)鹘y(tǒng)C18色譜柱。

· 膽甾醇基固定相

· 使用條件與C18柱相同

· 提高了立體選擇性和幾何異構(gòu)體的分離度

· 適用于天然物的分離

<strong>COSMOSIL Cholester色譜柱</strong>

規(guī)格

色譜柱	5μm Cholester
內(nèi)徑(mm)	2.0	3.0	4.6	10		20		28
柱長(mm)	ALL	ALL	ALL	20-150	250	20-100	150-250	ALL
出廠溶劑	乙腈 / 水 = 60 / 40	甲醇 / 水 = 70 / 30			甲醇 / 水 = 80/ 20	甲醇 / 水 = 70 / 30	甲醇 / 水 = 80/ 20
沖洗方法	去除色譜柱內(nèi)的緩沖液，鹽，酸的方法：使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗沖洗色譜柱內(nèi)附著物的方法，基線不穩(wěn)時的解決方法樣本不是蛋白質(zhì)時，使用甲醇或四氫呋喃沖洗。樣品是蛋白質(zhì)時，使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗
保存方法	短期（數(shù)日）保存：使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗長期（1個月以上）保存：使用后，先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱，再將流動相置換為乙腈/水=70/30或甲醇/水=70/30，保存。
pH范圍	pH2～pH7.5
最大耐壓	20MPa			15MPa
溫度范圍	最高可耐60度，建議在20~50度下進(jìn)行分析。
可使用的溶劑	除堿溶液和強酸溶液（pH1.5以下）以外都可以使用。（強堿溶液會使硅膠溶化，強酸溶液會使固定相脫落）注意點：溶劑粘度過高會導(dǎo)致壓力上升，請將壓力控制在20Mpa以下。使用酸性流動相或凝固點高的溶劑后，必須清洗色譜柱。
注意事項	一般情況下緩沖液濃度為0.005~0.02 mol/L即可。流動相在使用前一定要通過0.5μm以下的濾膜過濾。蛋白質(zhì)反相模式分析時，請使用大孔徑色譜柱（孔隙直徑300?) COSMOSIL Protein - R（粒徑5μm）。

色譜柱	2.5μm Cholester
內(nèi)徑(mm)	2.0	3.0
柱長(mm)	ALL	ALL
出廠溶劑	乙腈 / 水 = 50 / 50
沖洗方法	去除色譜柱內(nèi)的緩沖液，鹽，酸的方法：使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗沖洗色譜柱內(nèi)附著物的方法，基線不穩(wěn)時的解決方法樣本不是蛋白質(zhì)時，使用甲醇或四氫呋喃沖洗。樣品是蛋白質(zhì)時，使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗
保存方法	短期（數(shù)日）保存：使用不含緩沖液，鹽，酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。例：流動相為甲醇/磷酸緩沖液（20mmol/L） =50/50時，就使用甲醇/水 =50/50沖洗長期（1個月以上）保存：使用后，先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱，再將流動相置換為乙腈/水=70/30或甲醇/水=70/30，保存。